Наименование изделия: Бумага для проверки антикоррозийной формы
Код продукта: 060090

КОМПЛЕКТАЦИЯ: 10 упаковок/коробка (9 шт./упаковка)

Применение: Для обнаружения колиформ в продуктах питания, напитках и продуктах для здоровья, содержащих консерванты (включая бензоовую кислоту, сорбат и его соли).

Принцип проверки:

Питательные вещества, поглощающие на фильтровальной бумаге, используются в качестве культурного субстрата колиформ. Колиформа может ферментировать лактозу в среде для получения кислоты, так что бромметилпорошковый фиолетовый индикатор становится желтым от фиолетового. TTC в среде культуры редуцирован бактериями для того чтобы сформировать красную колонию которую можно легко определить. Консервант антидепрессант может устранить помехи в работе консервантов (2 г/л бензоиновой кислоты, бензоата натрия, сорбата, сорбата калия); путем асептического лечения, упаковка может непосредственно обнаруживать колипидные бактерии в пище и пить чистую воду.

Использование:

1. Обработка образца: Поместите 25 мл (или 25 г) образца в стерилизованную стеклянную бутылку, содержащую 225 мл стерилизованного физиологического раствора или другого разбавителя в асептической операции (с соответствующим количеством стеклянных таблеток, предварительно установленных в бутылке), и сделайте однородный разбавитель 1:10 после полного колебания или шлифовки. Твердые образцы лучше всего обрабатываются гомогенизатором в течение 1 мин со скоростью 8000–10000 об/мин для получения однородного разбавителя 1:10; Соберите 1 мл разбавителя 1:10 с помощью стерилизующей пипетки объемом 1 мл и введите его в пробирку для тестирования, содержащую 9 мл стерилизованного физиологического раствора или другого разбавителя, чтобы сделать 1:100 однородным разбавителем, а затем последовательно добавьте 10 раз разбавитель в соответствии с предыдущим шагом.

2. Инокуляция: В соответствии с требованиями стандартов пищевой гигиены или с оценкой загрязнения образца выберите разбавитель с соответствующим разведением, абсорбируйте три куска 10 мл и смажьте их тремя пакетами большой бумаги; 3 куска 1 мл были намазаны на 3 мешках мелкой бумаги; Возьмите еще 1 мл и разбавьте его 10 раз, впитите три кусочки по 1 мл и смажьте их 3 мешками мелкой бумаги. Затем осторожно расправьте бумагу рукой; мешки были отбракованы вертикально в инкубатор постоянной температуры (35-18°C) в течение 24ч, а затем результаты были замечены.

3, интерпретация результатов: Отрицательный результат: Бумага остается фиолетовой синей без изменений, есть ли красные пятна или красные галоны считаются двоеточием негативными. Положительный результат: Красные пятна или красный ореол на бумаге, желтые вокруг нее или желтые на всей бумаге считаются положительными колиформами.
4. Отчет о результатах: Проверьте соответствующую таблицу в формате колиформ MPN в соответствии с количеством положительных отходов, умножьте полученные данные на коэффициент разбавления и сообщите значение в формате MPN в виде колиформ на каждые 100 мл (г) образца.
 

1. Предложение образца для тестирования .

2.R & D команда для оказания технической поддержки.

3. Обеспечение упаковки, маркировки для индивидуальной настройки OEM.

В1.

Иногда цвет обезвоженной культуры СМИ между партиями имеет незначительные различия, повлияло бы это на результаты испытаний?

A1:исходные и условия хранения сырья отличаются, поэтому может наблюдаться небольшая разница в цвете, что является нормальным явлением. Продукция нашей компании должна пройти тщательную проверку и проверку сенсорной биологии перед продажей, чтобы убедиться, что все показатели продукта соответствуют стандартам предприятия, в пределах, разрешенных, не влияют на результаты испытаний.

В2.

После заливки жидкого средства на пластину, среда кажется трудно свернуться или время свертывания более длинное, это проблема с качеством продукта?

О2: Причина может быть:

Необходимая гидратация в процессе приготовления не была выполнена полностью. То есть дистиллированная  вода недостаточно кипит, чтобы растворить агар. Поскольку агар пропорция, легко оседает в дне бутылки, если не полностью встряхивать после высокотемпературной стерилизации, это приведет к неравномерному содержанию гена верхней агара культуры и трудно установить.

В3.

Почему некоторые колонии цветногенного цвета E. coli не показаны выше, но также подтверждены биохимическими тестами на E. coli (ложноотрицательный)?

О3: E. CHROMOGENIC medium основан на принципе специфического фермента E. coli и конструкции, 94% E. coli имеют β- глюкуронидазу фермент, с хромогенной ферментной субстратом роль среды в образовании сине-зеленых колоний. А около 4% кишечной палочки не имеют ферментов β- глюкуронидазы, в том числе относятся к O157: H7 Escherichia coli. Поэтому эти кишечные палочки не могут быть отображены на цветовом свойстве хромогенной среды E. coli, возможно ложноотрицательное на хромогенную среду. Однако традиционная среда того же самого не может избежать проблемы ложных отрицательных веществ, таких как: Отсутствие газовой или медленной ферментной лактозы нетерпимость также может привести к деформации 44.5 ложных отрицательных веществ в обычной среде. Для этой небольшой части кишечной палочки можно обнаружить другими методами.

В4.

Необходимо ли извлекать газовый мешок из упаковки во время анаэробной или микроаэробной культуры? Как использовать индикатор кислорода?

О4: Во время анаэробной или микроаэробной культуры необходимо использовать метод газообразования в соответствии с инструкциями производителя. Извлеките бумажный пакет из пластиковой упаковки, но не обрезайте бумажный пакет. Порвана внешняя упаковка индикатора кислорода, после чего его можно использовать.